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破伤风抗毒素皮试液配制方法的改进
中国误诊学杂志社编辑部:为预防破伤风的发生,对外伤、烧伤、动物咬伤等常规应用破伤风抗毒素(TAT),按照教科书上规定配制的皮试液浓度均高,因此,临床出现假阳性率很高占85%以上,频繁地为患者做脱敏注射增加了痛苦,很易产生急躁情绪,甚至拒绝注射,特别是小儿.
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国内破伤风抗毒素临床应用近况
外伤、烧伤、动物咬伤等患者,为预防破伤风发生,常用破伤风抗毒素(TAT)1500U肌注.按<医疗护理技术操作常规>第四版[1].规定,TAT使用前需做过敏试验,即用TAT15U/0.1ml皮内注射,15~20min后观察皮试结果,如局部无红肿、皮丘、红晕直径<1cm为阴性;有红肿,皮丘直径>1cm,有局部发痒、伪足或有其他过敏症状者为阳性.如皮试结果为阳性,则须行脱敏注射.在临床实践中,按常规的皮试浓度和判断标准,往往因TAT皮试阳性率甚高而需频繁地为患者行脱敏注射,使患者产生急躁、厌烦情绪,很不利于急诊救治.为此,对TAT的皮试液浓度、剂量、过敏试验判断标准、注射方法及能否免做皮试等问题查阅了近15年的有关资料,对有关问题综述如下.
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3种注射器配制青霉素皮试液浓度比较
由于青霉素类药物容易导致过敏性休克,因此中国药典明确规定,[1]使用该类药物前,必须做青霉素皮内敏感试验,皮试阴性者方可使用,皮试液为每毫升0.9%氯化钠注射液含青霉素 G钠(或钾)500U(相当于钠盐300μg).临床为了提高青霉素皮试液(下称皮试液)注射剂量的准确性,习惯使用玻璃卡介苗注射器或1ml一次性无菌塑料注射器,另加5号针头,按< 基础护理学>青霉素皮试液的配制方法进行操作.[2]已有文献报道因注射器存在死腔而推断青霉素皮试液浓度可能高于理论浓度,[3]但只是推断,未进行测试.另据国内报道,死于青霉素过敏者,约1/4发生在皮试时.[4]为此我们进行了3种注射器配制青霉素皮试液浓度测试实验,目的是了解青霉素皮试液浓度的实际情况,找出准确的配制方法与影响皮试液浓度的因素.现报告如下.
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链霉素致家族耳毒性反应二例
链霉素所致听神经损伤为一种常见的毒性反应,已为临床所重视.但家族耳毒性反应极为少见,现将我们在临床工作中所遇2例报告如下.例1 男,56岁.24岁时因患浸润型肺结核准备给予硫酸链霉素治疗,做皮肤试验时(皮试液浓度为2 500 U/ml)皮丘为阴性反应,但有头晕、耳鸣症状,未用氨基糖苷类药物,结果患者仍头晕、耳鸣、听力下降,未做特殊处理,现患者中度耳聋.
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用一次性皮试针管配制皮试液的方法探讨
为减少医源性感染,目前普遍使用一次性皮试针管配制皮试液,但用此皮试管按传统方法配制出的皮试液浓度常常不合标准,尚未引起人们的注意.本文将对使用一次性皮试针管配制皮试液过程中存在的问题及改进措施探讨如下:
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配制破伤风抗毒素皮试液的小窍门
临床上传统配制破伤风抗毒素(TAT)皮试液,一般取0.1 ml TAT加生理盐水至1 ml.缺点是:(1)忽视注射器死腔的存在.1 ml注射器5号针头死腔为0.07 ml,抽吸TAT至注射器刻度0.1 ml时,TAT实际量为0.17 ml,所配皮试液浓度显然高于标准浓度.(2)抽吸TAT时因死腔内有空气存在,与TAT混合产生泡沫,排气时有部分TAT随泡沫排出,造成浪费.
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不同配制方法对皮试液浓度影响的研究
如何配制皮试液,国内外有许多报道,但所指的皮试液浓度都是通过计算而得的理论上的浓度,未见有通过精密仪器测量后的皮试液浓度的报道.在临床上的皮试液配制过程中,由于配制针筒乳头和针头内的容量存在,配制次数及顺序,原液稀释浓度等因素,使得每次配制皮试液浓度,是否已达到理论上的正确浓度,不得而知.本文利用紫外分光光度计,以头孢唑啉钠为例,正确测量不同方法配制的皮试液的浓度,与理论上的浓度相对比,以期找出能达到理论上要求的正确浓度的配制方法,确保病人用药安全.现报道如下.
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头孢菌素类药物皮试液的配置方法与应用
青霉素与头孢菌素、头孢菌素类之间呈现不完全性交叉过敏反应.据统计,临床上有1%~8%对青霉素类有过敏史者对头孢菌素类也过敏.据报道,各种头孢菌素之间没有共同的抗原决定簇应用拟用药物做皮试,提高了皮试反应的准确性,减少了过敏的发生,增加了患者的用药机会.做皮肤过敏试验已有定论,但配置方法和皮试液浓度尚无明确统一规定,为此,作者对头孢菌素的皮试问题搜集资料如下,以供参考.
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4×106 U青霉素皮试液的配制法
青霉素作为广谱抗生素普遍应用于临床,但对于4×106 U(400万U)青霉素皮试液的配制,护理教科书与医疗护理技术操作常规均未做明确规定.临床工作中发现用8×105 U青霉素皮试液的配制方法来推算配制4×106 U青霉素皮试液浓度存有误差.自1999年始我们采用4×106 U青霉素存在膨胀液的计算方法配制青霉素皮试液,注入病人皮内试验浓度20 U~40 U,并逐一登记至2002年共1 000余人,均未发生异常.现将配制方法介绍如下.
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对需作过敏试验粉剂药物溶解后所占体积的研究
临床上所用粉剂药物繁多,特别是头孢和青霉素类药物,品种及规格更新频繁.我们发现,临床护士在配制皮试液时,通常首次稀释均以注入整毫升量的生理盐水,计算此时的浓度,是以注入的生理盐水量作分母,未考虑粉剂溶解后的体积,以至配出的实际皮试液浓度,比拟计的标准浓度低,势必影响皮试结果的可靠性.经研究,不同规格粉剂溶解后所占的体积不同,应当引起临床护理同行的注意.
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头孢菌素类皮试液浓度配制准确性的探讨
头孢菌素类(先锋霉素类)抗生素具有高效、低毒、抗菌谱广的优点,临床上应用越来越广泛,但在使用过程中可出现过敏反应,目前采用先做皮试的方法来预防.
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头孢菌素皮试液配制方法的改进
头孢菌素皮试液的浓度一般为0.5 mg/ml,传统的配制方法比较繁琐、费时,皮试液浓度的准确性也不易掌握.为提高其配制的准确性及简化配制步骤,提高护士工作效率,减轻工作强度,进行如下改进(以每瓶头孢菌素1 g为例).
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头孢菌素类药物皮试液的配制方法与应用
临床使用注射用头孢菌素类药物先做皮肤过敏试验已有定论,但配制方法和皮试液浓度尚无明确统一规定,现将我们的配制方法与应用体会介绍如下.
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3种注射器配制青霉素皮试液浓度比较
为了解青霉素皮试液浓度的实际情况,找出准确的配制方法与影响皮试液浓度的因素,我们进行了3种注射器配制青霉素皮试液浓度测试实验,现报告如下.
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头孢曲松钠皮试致患者过敏2例
1 病例报告例1.女 46岁因上呼吸道感染收入院,入院后给予5%葡萄糖盐水250ml加头孢曲松钠4克静脉滴注,用药前按常规做皮试,皮试液浓度为500UG/ml,10分钟后患者自述胸闷,心悸,呼吸困难,伴烦躁,查体见双眼结合膜充血明显,口唇紫绀,血压下降,立即给予吸氧3L/分,静脉推注地塞米松粉针剂5mg,10%葡萄糖酸钙10ml,异丙嗪注射液25mg 肌肉注射,10分钟后症状减轻,3-5分钟后症状消退.
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先锋霉素皮试液浓度的探讨
随着先锋霉素类抗生素的广泛应用,对先锋霉素过敏者日益增多,有使用先锋霉素后出现过敏性休克的报道[1].临床上,常以对青霉素是否过敏作为能否使用先锋霉素的依据,我们却发现有些病人对青霉素不过敏,使用先锋霉素后却出现过敏反应:如皮肤潮红、胸闷、头晕、注射部位皮肤瘙痒、红晕、皮丘隆起等.目前,国内对先锋霉素类皮试液浓度尚无明确标准,从1992年5月起,我们在使用先锋霉素前,常规对病人做过敏试验,5年来,我们总结了800例用不同浓度先锋霉素皮试液浓度对病人进行皮试的结果,对先锋霉素皮试液浓度进行初步探讨.
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避免配制破伤风抗毒素皮试液产生泡沫的方法
在日常工作中配制皮试液的顺序为先用1 ml注射器抽吸药液,然后加生理盐水稀释至所需量.但用此法配制破伤风抗毒素皮试液时,产生的泡沫会导致皮试液浓度不准确.我们改进配制方法以避免产生泡沫,效果满意.现报告如下.
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头孢替安皮试假阴性1例报告
患者女,65 岁.因发热、咳嗽1 d入院.T 40.7 ℃,P 106次/min,R 23次/min,BP 140/70 mm Hg,血常规示白细胞13.1×109/L,中性粒细胞87.9%.X线胸片示支气管感染.入院后给予物理降温、补液、抗炎治疗.行头孢替安皮试,皮试液浓度300 μg/ml.抽取皮试液0.02 ml,注入前臂掌侧下段内皮,20 min后观察见皮丘直径3 mm,为阴性表现.给予头孢替安1.5 g静滴,2次/d.
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头孢菌素类药物皮试浓度的临床观察
目的 探讨头孢菌素类药物适宜的皮试浓度.方法 按照头孢类药物皮试液浓度不同将患者分为A、B、C、D组各32、29、77、81例,分别使用浓度为250 μg/ml、350 μg/ml、450 μg/ml、550 μg/ml的皮试液进行皮试.观察并记录皮试结果及用药中及用药后不良反应.结果 4组皮试阳性率比较,差异无统计学意义(P>0.05);4组间青霉素阳性患者头孢菌素类药物皮试阳性率比较,差异无统计学意义(P>0.05);青霉素阳性患者与其他患者头孢菌素类药物皮试阳性率比较,差异亦无统计学意义(P>0.05).结论 应用头孢菌素类药物前用本品稀释后进行皮试简便可行,基于皮试液配制方法的简便性和可操作性,建议皮试液浓度采用250 μg/ml.
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破伤风抗毒素皮试液配制方法的改进
临床配制破伤风抗毒素(TAT)皮试液,一般取0.1ml加生理盐水至1ml.其缺点①忽视注射器死腔的存在.1ml注射器5号针头死腔为0.07ml,抽吸TAT至注射器刻度0.1ml时,TAT实际量为0.17ml,所配皮试液浓度显然高于标准浓度.②抽吸TAT时因死腔内有空气存在,与TAT混合产生泡沫,排气时有部分TAT随泡沫排出,造成浪费.为解决以上问题,笔者用1ml注射器先吸0.9%氯化钠注射液0.83ml,再吸TAT至0.93ml,摇晃混匀药液,皮内注射0.05ml.因驱除了注射器死腔内空气,泡沫产生减少或不产生,抽0.9%氯化钠注射液至注射器所示刻度0.83ml,加上死腔容积0.07ml,实际量则为0.9ml,再吸TAT 0.1ml, 即为300U/ml,皮内注射0.05ml即15U.笔者已用此方法行皮试2472例次.