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NOTCH配体Jagged2和Delta4对32D细胞的分化抑制研究
目的探讨Notch信号传导系统中相关配体Jagged2和Delta4对髓系前体细胞32D的分化抑制作用.方法构建Delta4高表达载体pTracer.CMV.Delta4.FLAG,制备Delta4-CHO细胞;将Notch1-32D细胞加入含G-CSF培养液的CHO、Jagged2-CHO及Delta4-CHO细胞中,观察Notch1-32D细胞分化及分化抑制情况. 结果构建成功Delta4高表达载体pTracer.CMV.Delta4.FLAG并稳定转染CHO细胞.在G-CSF存在下,Notch1-32D细胞可分化为成熟的粒细胞; Jagged2能抑制G-CSF引起的Notch1-32D细胞分化,但Delta4不能抑制G-CSF引起的Notch1-32D 细胞分化.结论分化抑制实验发现NOTCH 配体中,Delta4不能抑制G-CSF引起的Notch1-32D细胞分化,但Jagged2能抑制G-CSF引起的Notch1-32D细胞分化,为进一步揭示Notch信号传导系统的作用机制及其对造血系统的影响提供重要理论依据.
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携带人Gfi1基因重组慢病毒载体稳定转染32D细胞株的建立
本研究建立真核细胞表达的Gfi1基因重组慢病毒载体包装系统,并实现Gfi1在32D细胞中长期、稳定的表达,为进一步研究Gfi1基因在恶性血液病中的发生发展建立一个有效的平台.制备完整的重组慢病毒载体三质粒系统:转移质粒(pLOX-Gfi1/pLOX)、包装质粒(pCMV△AR8.2)及包膜蛋白质粒(pMD.G).用脂质体法将三质粒共转染包装细胞293T,48小时后收集病毒上清,并转染靶细胞32D;用Western-blot法检测293T及32D细胞中Gfi1的整合及表达.结果表明:慢病毒的3种质粒可以高效转染293T细胞,并成功包装出慢病毒.目的基因Gfi1能被重组慢病毒高效导入靶细胞32D,并稳定表达,在荧光显微镜下可直接观察到GFP.Western-blot能检测到Gfi1蛋白在包装细胞293T及32D细胞中的表达.结论:慢病毒介导的Gfi1基因可以高效稳定转染32D细胞并持续表达,证明本研究建立了一种有效的基因转移系统.
